生物信号采集处理系统是应用大规模集采电路、计算机硬件和软 件技术开发的一种集生物信号的放大、采集、显示、处理、存储和分 析的机电一体化仪器。现就 zl-620 生物信号采集处理系统在“左心室内压的测定”实 验中的应用与大家进行探讨,从而学习和掌握心导管插管术,观察药 物对左心室内压的影响并学习利用计算机进行左心室内压的测定和 分析。
【实验原理】 利用右颈总动脉从主支脉弓右侧顶端发出并与升主动脉形成一 直线的特征,可将心导管插入左心室。左心室内压的变化直接反映了 心脏泵功能的情况。左心室内压经计算机处理后,可求出心动周期中 左心室内压(lvp)的压力变化率(dρ/dτ)、心肌收缩万分缩短速 度(υpm、υmax)及心力环面积等多项参数,通过对这些参数的综 合分析,可用以评判左心室泵血功能状况。
【实验对象】
兔。
【实验器材】
zl-620 生物信号采集处理系统、哺乳类动物手术器械一套(包括 手术刀、粗剪、手术剪、眼科剪、止血钳、镊子等)、兔手术台、动 脉夹、心导管、zl-620 生物信号采集处理系统、血压换能器、1m 长 橡皮管一根、注射器、20%氨基甲酸乙酯溶液、1000u/ml 肝素溶液、 1:10000 肾上腺素溶液、1:10000 去甲肾上腺素溶液、普萘洛尔。
【方法和步骤】
1. 准备检压系统 将动脉导管与血压换能器相连,通过 三通开关用肝素溶液充灌血压换能器和动脉导管,排 尽血压换能器与动脉导管中的气泡,然后关闭三通开 关备用。
2. 手术准备
(1)家兔麻醉、固定:称重后,按 5ml/kg 体重的剂量于耳缘静脉注 射 20%氨基甲酸乙酯溶液。麻醉后,将家兔仰卧(背位)固定 于兔台。
(2)颈部手术:颈部剪毛,手术分离气管,插入气管插管。并分离 右侧颈总动脉约 3~4cm,在下面穿双线。一根在近头端处将动 脉结扎,然后用眼科剪刀在头端结扎处下约 0.3cm 的动脉壁上 剪一个向心脏方向的半斜切口,准备插心导管用。
(3)注射肝素:在耳缘静脉按 1000u/kg 剂量注射肝素,并等肝素在 家兔体内血液中混合均匀后进行下面的实验。
(4)插管心导管:于家兔左胸前触摸到心尖波动最明显处,测量此 点到右侧颈总动脉切口的距离,并将该段距离标记在心导管上, 以便掌握导管推进的最大深度。将充满肝素溶液的心导管经右 侧颈总动脉切口插入动脉腔内,直至动脉夹处。将备用线打一 松结。然后用左手拇指和示指捏住动脉和插在里面的导管,右 手慢慢放开动脉夹,如有血液由切口流出,可再次夹住动脉夹 并将松结稍稍扣紧,再放开动脉夹。放开动脉夹后,立即将导 管缓缓向动脉腔内推进。根据导管上的距离标记可估计导管离 左心室的距离。一般情况下,当导管尖端进入主动脉瓣入口时, 有明显的抵触、抖动感。当突然产品一个突空咸时,表示导管 已进入左心室内,计算机屏幕上所显示的波形会有明显变化, 即舒张压突然下降到—1.33~0kpa(--10~0mmhg)。用备用线结 扎心导管,并将心导管固定于近旁活动度较小的组织上。
3.实验装置
(1)将血压换能器的输入插头与 zl-620 生物信号采集处理系统的信 号放大器输入盒的 2 通道相连。
(2)调零、压力定标和制压:实验前,一般已调整好测量系统,实 验过程中,勿改动。若重新调零和压力定标,请参照“生理学 实验总论”。
(3)打开计算机,启动 zl-620 生物信号采集处理系统。点击 zl-620 菜单“实验/常用生理学实验”,选择“左心室内压的测定”。 设置 zl-620 放大器和采样参数(如下表)
(2)耳缘静脉注射 1:10 000 肾上腺素溶液 0.2~0.5ml,观察心泵功 能的变化。
(3)耳缘静脉注射 1:10 000 去甲肾上腺素溶液 0.2~0.5ml,观察心 泵功能的变化。
(4)观察长管窒息时心泵功能的变化。
(5)耳缘静脉注射普萘洛尔溶液 0.3ml,观察心泵功能的变化。
【实验结果】
1. 统计全班各组的结果,以平均值±标准差表示,比较各种处理 前后左心室内压各参数的变化,并用直方图表示。
2. 将实验结果打印输出或描绘于报告上。
【注意事项】
1. 推进导管时,应根据动脉走向而改变推进的方向和力度,以 防止导管刺破动脉壁而造成动物死亡。插管时,速度应尽可 能缓慢,用力应适度。当推进阻力较大时,可采用退退进进, 不断改变方向的办法插入。插管时,应密切注视计算机屏幕 或示波器上显示的血压波形,以判断导管所处的位置与状态。
2. 做各观察项目时,需使动物休息足够时间,并做好前、后对 照。
【思考题】 上述各种因素对心泵功能有什么改变?为什么
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